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當(dāng)前位置:首頁產(chǎn)品中心生化檢測試劑盒-微量法微量法生化試劑盒BC0225-100T/96S抗壞血酸過氧化物酶活性檢測試劑盒 微量法

抗壞血酸過氧化物酶活性檢測試劑盒 微量法
產(chǎn)品簡介:

儲存條件
2-8℃
中文名稱
抗壞血酸過氧化物酶活性檢測試劑盒 微量法
有效期
6個月
單位

推薦
若使用96孔板測定,需使用96孔UV板,推薦貨號YA0602
英文名稱
Ascorbate Peroxidase(APX) Activity Assay Kit
檢測方法
微量法 Spectrophotometer/Microplate Reader
規(guī)格
100T/96S

產(chǎn)品型號:BC0225-100T/96S

更新時間:2025-08-28

廠商性質(zhì):生產(chǎn)廠家

訪 問 量 :1174

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抗壞血酸過氧化物酶(APX)活性檢測試劑盒說明書
微量法
注意:本產(chǎn)品試劑有所變動,請注意并嚴(yán)格按照該說明書操作。
貨號:BC0225
規(guī)格:100T/96S
產(chǎn)品組成:使用前請認(rèn)真核對試劑體積與瓶內(nèi)體積是否一致,有疑問請及時聯(lián)系索萊寶工作人員。

試劑名稱規(guī)格保存條件
提取液液體110 mL×12-8℃保存
粉劑一粉劑×12-8℃保存
試劑一液體15 mL×1瓶2-8℃保存
試劑二粉劑×22-8℃保存
試劑三液體0.25mL×1支2-8℃保存

溶液的配制:
提取液:臨用前將粉劑一倒入提取液中,溶液為懸濁液,搖勻使用即可,2-8℃可以保存12周。
試劑二:臨用前加10 mL蒸餾水充分溶解。4℃可以保存1周。(由于試劑穩(wěn)定性較差,故多給一瓶)
試劑三:使用前先離心。臨用前根據(jù)樣本量取適量試劑三用蒸餾水稀釋100倍使用即可。
產(chǎn)品說明:
    APXEC.1.11.1.11是植物清除活性氧的重要抗氧化酶之一,也是抗壞血酸代謝的關(guān)鍵酶之一。APX具有多種同功酶,分別定位于葉綠體、胞質(zhì)、線粒體、過氧化物和乙醛酸體,以及過氧化體和類囊體膜上。APX催化H2O2氧化AsA,是植物AsA的主要消耗者。APX的活性直接影響到AsA的含量,APXAsA具有一定的負(fù)相關(guān)性。
APX催化H2O2氧化AsA,通過測定AsA氧化速率,來計(jì)算得APX活性。

注意:實(shí)驗(yàn)之前建議選擇2-3個預(yù)期差異大的樣本做預(yù)實(shí)驗(yàn)。如果樣本吸光值不在測量范圍內(nèi)建議稀釋或者增加樣本量進(jìn)行檢測。
需自備的儀器和用品:
    紫外分光光度計(jì)/酶標(biāo)儀、微量石英比色皿/96UV板、低溫離心機(jī)、移液槍、水浴鍋、研缽/勻漿器、冰和蒸餾水。
操作步驟:具體操作步驟詳見“產(chǎn)品資料"附件
實(shí)驗(yàn)實(shí)例:

  1. 取0.1g小薊樣本加入1mL提取液進(jìn)行勻漿研磨,取上清,之后按照測定步驟操作,用微量石英比色皿測得計(jì)算ΔA空白管=A1空白管-A2空白管=0.5453-0.5287=0.0166,ΔA測定管=A1測定管-A2測定管=0.7097-0.6137=0.096,按樣本質(zhì)量計(jì)算酶活:

APX活性(U/g 質(zhì)量)=1.79×(ΔA測定管-ΔA空白管) ÷W=1.79×(0.096-0.0166÷0.1=1.421 U/g 質(zhì)量。
相關(guān)發(fā)表文獻(xiàn):

  1. Meng C, Quan T Y, Li Z Y, et al. Transcriptome profiling reveals the genetic basis of alkalinity tolerance in wheat[J]. BMC genomics, 2017, 18(1): 24.

  2. Qin Y, Djabou A S M, An F, et al. Proteomic analysis of injured storage roots in cassava (Manihot esculenta Crantz) under postharvest physiological deterioration[J]. PloS one, 2017, 12(3).

  3. Zhang Z, Liu H, Sun C, et al. A C2H2 zinc-finger protein OsZFP213 interacts with OsMAPK3 to enhance salt tolerance in rice[J]. Journal of plant physiology, 2018, 229: 100-110.

  4. Zhao Y, Yu W, Hu X, et al. Physiological and transcriptomic analysis revealed the involvement of crucial factors in heat stress response of Rhododendron hainanense[J]. Gene, 2018, 660: 109-119.

  5. Djabou A S M, Qin Y, Thaddee B, et al. Effects of Calcium and Magnesium Fertilization on Antioxidant Activities during Cassava Postharvest Physiological Deterioration[J]. Crop Science, 2018, 58(3): 1385-1392.

參考文獻(xiàn):

  1. Shigeoka S, Nakano Y, Kitaoka S. Metabolism of hydrogen peroxide in Euglena gracilis Z by L-ascorbic acid peroxidase[J]. Biochemical Journal, 1980, 186(1): 377.

  2. Caverzan A, Passaia G, Rosa S B, et al. Plant responses to stresses: role of ascorbate peroxidase in the antioxidant protection[J]. Genetics and molecular biology, 2012, 35(4): 1011-1019.

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